2 外观均匀度2.1 取本品适量，置光滑纸上，平铺约成5cm2，将其表面压平，2.2 在亮的背景下观察，应呈现均匀的色泽，无花纹与色斑。3 溶解性3.1 取本品0.1g，置纳氏比色管中加水50ml，使浓度为临床使用时高剂量浓度的2倍。3.2 上下翻转10次，观察，记录。3.3 静置30分钟，观察，记录。3.4 注意事项： 在25℃±2℃条件下检验。4??????? 装量 取供试品3个，除去外盖和标签，容器外壁用适宜的方法清洁并干燥，分别称定重量，除去内容物，容器用乙醇洗净并干燥，再分别称定空容器的重量，求出每个容器内容物的装量不少于98%，平均装量不少于标示装量，均应符合规定。如有1个容器装量不符合规定，则另取3个复试，应全部符合规定。
　　【含量测定】1 试剂（分析纯）、水（纯化水、灭菌水）标准品（庆大霉素）、灭菌缓冲液（磷酸盐缓冲液（pH7.8））、培养基（I号培养基）、菌种（短小芽孢杆菌）2 仪器与用具：双碟、陶瓦盖、钢管、钢管放置器、恒温培养箱、灭菌刻度吸管、玻璃容器、称量瓶、毛细滴管、抑菌圈直径（面积）测量仪、超净工作台3 操作方法3.1 称量：3.1.1 称量前，将标准品从冰箱取出，使与室温平衡；供试品应放于干燥器内至少30分钟方可称取。
　　3.1.2 标准品与供试品的称量与稀释最好一次取样称取稀释，不得将已取出的标准品或供试品倒回原容器内，标准品称量不可少于20mg，取样后立即将称量瓶及被称物盖好，以免吸水。
　　3.1.3 称样量的计算： V×C ? W＝ P 式中 W：为需称取标准品的重量(mg)；V：为溶解标准品制成浓溶液时用容量瓶的体积量（ml）；C：为标准品浓溶液的浓度（u/ml或ug/ml）；P：为标准品的纯度（u/mg或ug/mg）3.2 稀释：稀释操作应遵照容量分析的操作规程。3.2.1 从冰箱中取出的标准品溶液，必须先在室温放置，使其温度达到室温后，方可量取。3.2.2 标准品与供试品溶液的稀释应采用容量瓶，每步稀释取样量不得少于2ml为宜，稀释步骤一般不超过3步。
　　3.2.3精密称取供试品适量（按上述公式计算），加灭菌水制成每1ml含1000单位溶液。第一步 取5ml（1000U/ml）→50ml容量瓶→100U/ml第二步 取5ml（100U/ml）→50ml容量瓶→10U/ml（H）取5ml（100U/ml）→100ml容量瓶→5U/ml（L）3.2.4 每次吸取溶液用精密刻度玻璃吸管，量取溶液前要用被量液流洗吸管2～3次，吸取样品溶液后，用滤纸将外壁多余液体擦去，从初始刻度开始放溶液。3.2.5 稀释标准品与供试品用的缓冲液应同批和同瓶，以免因PH值或浓度不同影响测定结果。3.2.6 稀释时，每次加液至容量瓶近刻度前，稍放置片刻，待内壁的液体完全流下，再准确补加至刻度。
　　3.3 双碟的制备：3.3.1 在半无菌室内进行，应注意微生物及抗生素的污染，培养基应在水浴中或微波炉中融化，避免直火加热。3.3.2 底层：用灭菌大口吸管（25ml），吸取已融化的培养基20ml注入双碟内，等凝固后，更换干燥的陶瓦盖，盖好，放于35～37℃培养箱中保温，使易于摊布菌层。3.3.3 菌层：取出试验用菌悬液（0.3%），按已试验妥的菌量（标准品溶液的高浓度所致的抑菌圈直径在18～24mm），用灭菌吸管吸取菌悬液加入已融化并保温在水浴中（一般细菌48～50℃，芽孢可至60℃）的培养基内，摇匀作为菌层用，用灭菌大口10ml吸管，吸取菌层培养基5ml，使均匀摊布在底层培养基上,置水平台上，用陶瓦圆盖覆盖，放置20～30分钟待凝固，备用。
　　3.4 放置钢管： 用钢管放置器，用劲干热灭菌的镊子将钢管装于玻璃管中，放于钢管放置器上，将双碟打开，放入双碟台上，使钢管平稳落在培养基上，注意使各个钢管下落的高度基本一致。钢管放妥后，应使双碟静置5～10分钟，使钢管在琼脂内稍下沉稳定后，再开始滴加抗生素溶液。
　　3.5 滴加抗生素溶液：3.5.1 每批供试品取4～10个双碟，滴加溶液用毛细滴管或定量加样器，在滴加之前须用滴加液洗2～3次。3.5.2 滴加标准品与供试品溶液，在双碟的4个钢管中分别对角滴加标准品（S）及供试品（T）高（H）、低（L）两种浓度的溶液滴加溶液的顺序： SH→TH→SL→TL,滴加溶液至钢管口平满，注意滴加溶液间隔不可过长，因溶液的扩散时间不同影响测定结果。3.5.3 每份滴加的溶液为1单位，但双碟数每次不超过5个，如1份溶液滴加双碟数目多，可分次滴加。每种溶液各用1支毛细滴管。
　　3.6 培养： 滴加完毕，用陶瓦盖覆盖双碟，平稳置于双碟托盘内，双碟叠放不可超过3个，避免受热不均，影响抑菌大小，以水平位置平稳移入培养箱中间位置，35～37℃培养14-16小时.