我国开展HCV分子流行病学的研究工作虽然较迟，但在兰州兽医研究所和解放军军需大学等研究单位的不懈努力下，已使我国HCV遗传发生关系全貌的系谱图日渐清晰。军需大学兽医研究所采用RT-PCR方法，从我国10个省、市、自治区收集四个HCV流行毒株中，扩增了HCV EZ基因中主要抗原位点编码区。对各扩增片段进行了序列测定，通过计算机分析构建了系统发生树，并确定了它们之间的遗传相关性。结果表明，对个流行毒株中的 18株属基因 Ⅱ群，占78．26％；另外5个流行株与传统的石门系强毒，兔化弱毒株属基因1群，占21．74％。两群间测序区的核酸同源性只有78．9％。此外，根据序列差异程度将基因Ⅱ群流行株分为3个亚群，各基因群HCV在地域分布上末发现明显的特征性。该研究初步揭示了我国较大范围内流行的HCV毒株与传统的石门强毒和疫苗用兔化弱毒在抗原基因上存在较大的差异，以及我国HCV流行株在地域分布的多样性［2,3］。兰州兽医研究所的研究结果同样表明，我国和世界其他国家一样，近年来HCV 流行毒已呈远向疫苗毒的方向演变。近期HCV流行毒与古典HCV之间已有较大差异（核酸和氨基酸同源性分别为82．2％～84．3％和87．9％～90. ％）［4］

但根据中国兽药监察所进行的猪瘟兔化弱毒疫苗对不同HCV野毒株的免疫保护相关性研究结果表明：虽然在我国不同地区所分离的HCV野毒株在其病原生物学上有所差异，但用我国目前使用的猪瘟免化弱毒疫苗免疫的猪完全能够抵抗这些野毒的攻击。结果再一次证明：我国现用的猪瘟兔化弱毒疫苗对预防目前流行的HCV是完全有效的［1］。

1．3疫苗的质量问题

我国研制的中国系（C系）猪瘟兔化弱毒是国际公认的最佳疫苗用株，很多欧亚国家采用了C系弱毒苗有效地控制了HC流行。但我国近年来常有免疫失败的报道，其原因虽然很多，疫苗的质和量有着重要的影响。疫苗免疫效果通常以防止临床感染为标准。应用这一标准时，常有部分猪免疫后，抗体水平不能达到防止亚临床感染水平，这部分猪感染强毒后常可引起亚临床感染。此种亚临床感染猪虽无明显症状，但在其存活期终生带毒、散毒，为HCV主要储存宿主，剖检可见胸腺萎缩，淋巴结肿大。这些猪的存在，便可形成HC常发地区。因此，专家指出，疫苗应以能保护防止亚临床感染为标准。

用不同剂量的C株苗免疫猪，证实免疫剂量与保护水平密切相关。剂量不足时，攻毒后不能阻止强毒在体内复制和带毒。免疫剂量提高到80～100P50（约320～400RID，RID为兔体反应量），攻毒后能制止亚临床感染，所有耐过猪均不带毒。目前欧洲为消灭HC亚临床感染，多采用加大免疫剂量的方法。欧洲药典规定用 C株疫苗免疫时，肌肉注射剂量为100PD50（400RID）。我国猪瘟细胞苗出厂检验以5万倍稀释能致兔体热反应为合格，即每毫升原液含5万RID。规定的免疫剂量为15万RID，折算为37PDN。这一剂量远低于国际标准，显然在HC不稳定地区应用这一剂量，不足以切断HC亚临床感染引起的恶性循环［5］

HCV和牛病毒性腹泻病毒（BWDV）2种瘟病毒之间有较密切的抗原性和血清学关系。两者同源性很高，能互相诱导一定程度的同源病毒抗体。在西欧国家，猪 BVDV的感染率很高（20％～40％）。BVDV感染妊娠母猪可引起繁殖障碍，病毒可经胎盘传染胎儿，使所产仔猪构成亚临床感染。据国内生产厂家反映，用家兔测定牛睾丸原代细胞生产的猪瘟兔化弱毒疫苗效价时，各批次间相差悬殊。究其原因有多种，但其中最值得注意的是瘟病毒（BVDV）污染。因为瘟病毒在体外培养大多不产生CPE，故不易引起检验人员注意。污染主要来源是小牛血清，从瘟病毒先天感染的小牛分离的血清含有感染性病毒，常规的热灭活又不能确保瘟病毒灭活。用BVDV污染的HC疫苗免疫母猪后，仔猪发生类似先天性HC感染，死亡率增加，因此给生产造成很大损失。

疫苗的运输、保存、使用不当，亦易影响免疫效果。猪瘟冻干苗应在低温条件下运输和保存，稀释后应立即使用，不能存放过久。有人曾在夏季一个市场防疫注苗点进行试验，早晨刚稀释的疫苗经检验完全符合出厂标准，即每头份含150RID，但到傍晚，自注苗点抽检最后剩下1瓶稀释的疫苗检测，每1头份只有15个兔体反应量，在Id中效价已损失90％。因此，稀释后的疫苗如不能立即用完，应放在冰瓶内低温保存。此外，疫苗注射操作过程中的失误，如使用失真空的疫苗或过有效期的疫苗；消毒不严，造成潜伏期病毒的传播等都会影响疫苗的免疫效果。